ВПЛИВ ІОНІВ КАДМІЮ НА ВМІСТ ОКРЕМИХ ГРУП ЛІПІДІВ В ТКАНИНАХ І ОРГАНАХ LYMNAEA STAGNALIS

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.32782/naturaljournal.5.2023.1

Ключові слова:

триацилгліцероли, диацилгліцероли, неетерифіковані жирні кислоти, фосфоліпіди, іони важких металів, прісноводні молюски, окислювальний стрес

Анотація

Розглянуто особливості вмісту загальних ліпідів та їх окремих груп (триацилгліцероли (ТАГ), диацилгліцероли (ДАГ), неетерифіковані жирні кислоти (НЕЖК) та фосфоліпіди (ФЛ)) у гемолімфі, гепатопанкреасі, мантії та нозі Lymnaea stagnalis за дії іонів кадмію в концентрації, що відповідала 5 ГДКрибогосп. З’ясовано, що вміст зазначених сполук в організмі L. stagnalis є різноплановим, органоспецифічним та значною мірою залежить від тривалості дії токсиканту (2, 7 діб). Встановлено, що іони Cd2+ незалежно від тривалості експозиції обумовлюють зменшення вмісту ТАГ у гепатопанкреасі, мантії та нозі L. stagnalis на 16,16–38,76% (p ≤ 0,05–0,01), що, імовірно, свідчить про активацію ліпаз та посилення процесів ліполізу задля компенсації високих енергетичних витрат, пов’язаних із адаптацією організму молюсків до дії досліджуваного токсиканта. Поряд із зниженням показників ТАГ у гепатопанкреасі L. stagnalis зафіксовано збільшення вмісту ДАГ та НЕЖК на 10,43–34,59% (p ≤ 0,05–0,01) за короткострокової дії Cd2+ (2 доби), а при пролонгуванні до 7 діб відмічено суттєве накопичення ДАГ в органі. Щодо показників НЕЖК, то статистично достовірних відмінностей з контрольною групою тварин для гепатопанкреасу не встановлено. У мантії, нозі та гемолімфі вміст окремих ліпідних груп специфічний та обумовлений часом перебування L. stagnalis у токсичному середовищі. Отримані нами свідчать з одного боку про активацію захисних механізмів у досліджуваних тварин, а з іншого – про фізіологічні та біохімічні зрушення в організмі. Отже, вміст ліпідів досліджених груп відображає адаптивну реакцію організму L. stagnalis на зміну чинників навколишнього середовища.

Посилання

Дудник С.В., Євтушенко М.Ю. Водна токсикологія: основні теоретичні положення та їхнє практичне застосування : монографія, Київ : Вид-во Українського фітосоціологічного центру, 2013. 297 с.

Крайнюков О.М., Тімченко В.Д. Вплив хімічних речовин токсичної дії на представників біотичної складової водних екосистем. Проблеми охорони навколишнього природного середовища та екологічної безпеки. 2016. 38. С. 111–120.

Ситник Ю.М., Арсан О.М., Киричук Г.Є., Ляшенко А.В., Вітовецька Т.В. Вміст важких металів в органах та тканинах молюсків деяких водойм міської зони Києва. Наукові записки Тернопільського національного педагогічного університету імені Володимира Гнатюка. 2012. (51). С. 230–236.

Киричук Г.Є., Стадниченко А.П. Фізико-хімічні особливості гемолімфи Planorbarius purpura та P. corneus (Mollusca: Gastropoda: Pulmonata: Bulinidae. Вісник Львівського університету. Серія біологічна. 2003. 32. С. 239–245.

Ячна М.Г., Мехед О.Б., Третяк О.П., Яковенко Б.В. Вміст фосфоліпідів у тканинах коропа луcкатого (Cyprinus carpio L.) за дії натрій лаурилсульфатвмісного та безфосфатного синтетичних миючих засобів. Наук. зап. Терноп. нац. пед. ун-ту. Сер. Біол. 2019. № 2 (76). С. 48–52.

Chan C.Y., Wang W.X. A lipidomic approach to understand copper resilience in oyster Crassostrea hongkongensis. Aquatic Toxicology. 2018. 204. 160–170. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2018.09.011.

Choong G., Liu Y., Templeton D.M. Interplay of calcium and cadmium in mediating cadmium toxicity. Chemicobiological interactions. 2014. 211. P. 54–65. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2014.01.007.

Ekin I., Başhan M., Şeşen R. A comparison of the fatty acid composition of the phospholipid and neutral lipid of Unio elongatulus (Bourguignat, 1860) (Bivalvia: Unionidae) mussels from 4 different localities in southeastern Anatolia, Turkey. Turkish Journal of Zoology. 2011. 35 (6). P. 837–849. https://doi.org/10.3906/zoo-1002-5.

Folch J., Lees M., Sloante Stanley A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J Biol Chem. 1957. 226 (1). P. 497–509. https://doi.org/10.1016/ s0021-9258(18)64849-5.

Hochachka P.M., Somero G.N. Biochemical Adaptation. Oxford : Princeton University Press, 2002.

Kates M. Isolation, analysis and identification of lipids. Techniques in Lipidology. 1972. P. 268–618.

Lee J.W., Jo A.W., Choi C., Kim J.H. Review of cadmium toxicity effects on fish: oxidative stress and immune responses. Environmental Research. 2023. 236. 116600. https://doi.org/10.1016/j.envres.2023.116600.

Lehninger A.L., Nelson D.L., Cox M.M. Lehninger principles of biochemistry. Macmillan, 2005. Liu Y., Chen Q., Li Y., Bi L., Jin L., Peng R. Toxic effects of cadmium on fish. Toxics. 2022. 10 (10). 622 p. https://doi.org/10.3390/toxics10100622.

Rajakumar S., Bhanupriya N., Ravi C., Nachiappan V. Endoplasmic reticulum stress and calcium imbalance are involved in cadmium-induced lipid aberrancy in Saccharomyces cerevisiae. Cell Stress Chaperones. 2016a. 21. P. 895–906. https://doi.org/10.1007/s12192-016-0714-4.

Ren J., Luo J., Ma H., Wang X., Ma L. Q. Bioavailability and oxidative stress of cadmium to Corbicula fluminea. Environmental Science: Processes & Impacts. 2013. 15 (4). P. 860–869. https://doi.org/10.1039/c3em30288a.

Vance D.E., Vance J.E. Biochemistry of Lipids, Lipoproteins and Membranes. 4th ed. Amsterdam : Elsevier, 2002.

##submission.downloads##

Опубліковано

2023-12-22